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C. F. Macrae, I. Sovago, S. J. Cottrell, P. T. A. Galek, P. McCabe, E. Pidcock, M. Platings, G. P. Shields, J. S. Stevens, M. Towler y P. A. WoodEl programa Mercury, desarrollado en el Centro de Datos Cristalográficos de Cambridge, se diseñó originalmente como una herramienta de visualización de estructuras cristalinas. A lo largo de los años, los campos y las comunidades científicas de la cristalografía química y la ingeniería de cristales se han desarrollado para requerir un software de análisis estructural más avanzado. Mercury ha evolucionado junto a estas comunidades científicas y ahora es una potente plataforma de análisis, diseño y predicción que va mucho más allá de la simple visualización de estructuras.Palabras clave: Mercury; programas informáticos; visualización de estructuras cristalinas; comparación de estructuras; empaquetamiento de cristales.Leer artículoArtículos similares

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IntroducciónEl sistema del complemento (C) es una parte importante de la inmunidad innata en el plasma humano, y la vía alternativa del complemento (AP) es la primera línea de defensa contra los microbios invasores. La AP se activa espontáneamente en todas las superficies no protegidas, lo que conduce a la unión covalente de la principal opsonina del complemento, C3b, a grupos hidroxilo o amina. La C3b unida a la superficie forma una base para las convertasas enzimáticas, que escinden las moléculas C3 intactas hasta que la superficie del activador se cubre de moléculas C3b. Esta opsonización conduce a la opsonofagocitosis, a la propagación de la cascada que da lugar a la liberación de péptidos quimiotácticos y anafilatóxicos, y a la formación de complejos líticos de ataque a la membrana. Para evitar el ataque contra las estructuras del huésped y el consumo excesivo de los componentes en el plasma, el complemento debe estar estrechamente regulado.

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El principal regulador del PA en el plasma es el factor H (FH). El FH es una glicoproteína de 150 kDa y consta de veinte módulos globulares de proteína de control del complemento (CCP), cada uno de los cuales tiene aproximadamente 60 residuos. La actividad de control del complemento de FH se encuentra en los dominios 1-4 (FH1-4) [1], [2]. La llamada actividad cofactora de FH es necesaria para la inactivación de la opsonina central del complemento C3b por el factor I de serina-proteasa. Además, FH regula la activación del PA compitiendo con el factor B en la unión a C3b y acelerando el decaimiento de la convertasa del PA C3bBb [3], [4]. Para regular el complemento, el FH tiene que discriminar entre las superficies del huésped y las que no lo son, ya que la activación está garantizada en las superficies microbianas, pero obviamente no en las del huésped. Se sabe que este sitio de “reconocimiento de objetivos” se encuentra en los dominios carboxilo-terminales 19-20 (FH19-20) [5], [6]. Nuestras estructuras de los dominios 19-20 solos [7] y en complejo con C3d [8] mostraron cómo SCR20 puede unirse a superficies celulares y que contienen glicosaminoglicanos, mientras que SCR19 se une simultáneamente a la parte C3d de C3b facilitando el control del PA. Esta doble capacidad de unión facilita el reconocimiento de la diana por parte del PA.

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(ALK) y Bromodomain-4 (BRD4) mediante el ajuste de la selectividad de la cinasaEllen Watts,† David Heidenreich,‡§ Elizabeth Tucker,∥ Monika Raab,⊥ Klaus Strebhardt,⊥ Louis Chesler,∥ Stefan Knapp,‡§# Benjamin Bellenie,*† y Swen Hoelder*†Ellen Watts†Cancer

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disminución de la actividad de PLK-1, como se esperaba de informes anteriores.24 Los compuestos 16f y 16g fueron equipotentes en la actividad de ALKF1174L, en comparación con 16c. Es importante destacar que el SAR divergente entre ALK y PLK-1

en la potencia del ALKF1174L en comparación con el meta-análogo 16h y todavía no eran tan potentes como el análogo bencílico no sustituido 16i.A continuación, consideramos los sustituyentes heterocíclicos. El tiazol 23f mostró una disminución de la actividad del ALKF1174L, pero

7,67-7,64 (m, 1H), 3,96 (s, 3H), 3,92 (d, J = 6,3 Hz, 1H), 2,20-2,11 (m, 1H), 1,05 (d, J = 6,9 Hz, 6H).Ácido 3-Isobutoxi-4-nitrobenzoico (3a) A 2 (150 mg, 0,59 mmol) en una mezcla de disolventes THF/H2O (1:1,

0,88 (t, J = 7,4 Hz, 3H).(S)-4-((8-Cyclopentyl-7-ethyl-5-methyl-6-oxo-5,6,7,8-tetrahydropteridin-2-yl)amino)-3-ethoxy-N-(1-methylpiperidin-4-yl)benzamide (16d) Se sintetizó 16d en un rendimiento del 42% (sólido blanco, 23

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Todos los metagenomas se depositaron en el Archivo Europeo de Nucleótidos (ENA) con el número de acceso del estudio PRJEB13222 (ERP014771) y los números de acceso de las muestras SAMEA3913358 (ERS1100492) a SAMEA3913367 (ERS1100501).

Este artículo no contiene ningún estudio con participantes humanos ni con animales vertebrados o cefalópodos realizado por ninguno de los autores. Este estudio está exento de procedimientos de aprobación ética de acuerdo con la legislación portuguesa vigente. Todos los procedimientos en los que participaron animales se ajustaron a las normas éticas de la institución (Centro de Ciencias del Mar (CCMAR), Faro, Portugal) en la que se procesaron las muestras de coral. Este estudio no involucró especies de octocorales en peligro o protegidas (según la lista roja de especies amenazadas de la UICN, 02/11/2019: http://www.iucnredlist.org/searc). El muestreo de octocorales no tuvo lugar dentro de áreas de propiedad privada o protegidas. Los procedimientos de muestreo fueron mínimamente intrusivos y preservaron las colonias de octocorales en el sitio de campo.

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